Стерилизация инструментария и аппаратуры. Стерилизация аппаратов для наркоза и искусственной вентиляции легких Дезинфекция стерилизация наркозно дыхательной аппаратуры

4. Уход за наркозно-дыхательной аппаратурой и техника безопасности в операционной

Аппараты ИН и ИВЛ относятся к техническим средствам, которые используются повседневно и подключаются к больным на более или менее длительный период, контактируя при этом непосредственно с их дыхательной системой. Это создает условия для переноса микрофлоры от больного в аппарат и обратно. Накоплены убедительные данные, свидетельствующие о возможности перекрестного инфицирования больных в случаях недостаточного обеззараживания рассматриваемых аппаратов. Обсеменение их микроорганизмами, вегетирующими в дыхательных путях больных, наиболее вероятно при рециркуляции газов. Однако такая возможность не исключена и в условиях нереверсивного контура дыхания.

Инфицированию наиболее подвержены присоединительные элементы аппаратов - коннекторы, адаптеры, тройники и др. Часто при длительной анестезии и ИВЛ бактерии с циркулирующими газами и конденсатом из дыхательных путей больного переносятся в гофрированные шланги, сборник конденсата, увлажнитель и другие части дыхательного блока аппарата.

В связи с этим большое значение приобретает систематически и правильно проводимое обеззараживание аппаратов ИН и ИВЛ. Наиболее широко используется в клинической практике методика обеззараживания, разработанная в Научно-исследовательском институте медицинского приборостроения и Научно-исследовательском институте дезинфекции и стерилизации. В соответствии с ней, как и другими предложенными методиками, первым этапом обеззараживания является мойка комплектующих деталей под струей воды. Затем на 15-20 мин погружают детали в горячий (50 °С) раствор, который готовят из расчета 20 мл 30% пергидроля и 5 г моющего порошка ("Прогресс", "Новость" или др.) на 1 л горячей воды. По прошествии указанного времени замоченные детали аппарата моют в том же растворе ватно-марлевым тампоном и прополаскивают в проточной воде.

Вторым этапом обеззараживания по этой методике является дезинфекция или стерилизация. С целью дезинфекции резиновые детали (дыхательные мешки, маски, гофрированные трубки, прокладки и др.), корпус и станину адсорбера с вкладышем, клапан разгерметизации, слюдяные клапаны погружают на 1 ч в 10% раствор формалина или 3% раствор перекиси водорода. Затем их дважды прополаскивают в дистиллированной воде, протирают стерильной простыней и хранят в медицинском шкафу. Дыхательные гофрированные шланги для просушивания подвешивают.

Помимо описанной методики, в последние годы разработаны и другие. В частности, заслуживают внимания два варианта обеззараживания, предложенные Д. В. Вартазаряном (1987). Один из них основан на применении хлоргексидина и заключается в том, что после промывания подлежащих дезинфекции частей аппарата в проточной воде их замачивают в 0,5% растворе хлоргексидина на 30 мин. Одновременно заливают 0,02% раствор хлоргексидина в увлажнитель аппарата ИВЛ. Затем аппарат собирают, заливают в испаритель эфира 0,5% спиртовой раствор хлоргексидина (раствор состоит из 40 мл 70% этилового спирта и 1 мл 20% раствора хлоргексидина), устанавливают полузамкнутый контур и в течение 60 мин подают в него через дозиметр 2 л кислорода в минуту. После этого аппарат проветривают потоком кислорода при полуоткрытом контуре в течение 10-15 мин. Достоинством методики является высокая его эффективность; недостаток заключается в большом расходе дезинфектанта и продолжительном процессе дезинфекции.

Второй вариант позволяет обеззараживать аппараты относительно быстро. Он основан на использовании ультразвукового аэрозольного ингалятора, в который заливают 50 мл 0,5% водного или спиртового раствора хлоргексидина или 0,5% раствора надуксусной кислоты. После того как детали промыты и аппарат собран, к дыхательному контуру подсоединяют ингалятор и включают его в электросеть. Он работает в течение 30 мин в условиях полузакрытого контура. При этом увлажнитель должен быть заполнен 0,02% раствором хлоргексидина. После завершения дезинфекции через аппарат в течение 15 мин пропускают кислород для удаления остатков дезинфицирующих средств.

В профилактике передачи инфекции через наркозно-дыхательные аппараты в последние годы важную роль отводят включению в дыхательный контур бактериальных фильтров. Отечественная промышленность выпускает фильтр бактериальной защиты "Фибаз-1-05", предназначенный специально для рассматриваемых аппаратов. Проведенные исследования показали высокую его эффективность.

Использование при анестезии сжатых газов и воспламеняющихся ингаляционных анестетиков требует соблюдения определенных правил безопасности. В связи с увеличением в последние десятилетия количества используемых в операционных различного рода электрических аппаратов и приборов, а также с широким использованием синтетических материалов, являющихся источником статического электричества, потенциальная опасность взрывов в условиях применения воспламеняющихся анестетиков значительно возросла. В целях безопасности необходимо строго выполнять требования, предусмотренные соответствующей инструкцией.

5. Основные правила безопасности

1. Баллоны с кислородом и закисью азота, находящиеся в операционном блоке, должны быть надежно фиксированы к аппаратам ИН или к стене. Во избежание самовозгорания при подсоединении редуктора и шлангов нельзя использовать прокладки из резины, кожи, промасленного картона. На резьбу соединительных элементов можно наносить только специальные инертные к кислороду смазки.

2. При проведении анестезии воспламеняющимися анестетиками в операционной нельзя применять открытый огонь, диатермию, искрящееся электрооборудование, эндоскопы.

3. В операционных розетки и штепсельные разъемы должны быть расположены на уровне не менее 1,6 м от пола и снабжены блокирующими устройствами, не позволяющими случайно вынуть вилку. Операционные должны хорошо вентилироваться. Влажность воздуха в них должна быть не ниже 60%.

4. Операционные столы, аппараты ИН, ИВЛ, другие электрические аппараты и приборы должны быть надежно заземлены через специальные шины.

5. Персонал операционных обязан носить одежду из хлопчатобумажной ткани, обувь на кожаной подошве или галоши из антистатической резины.

6. Сразу после окончания анестезии анестетики следует сливать из испарителей.

7. Все части аппаратов ИН, требующие смазки, следует смазывать только специальной смазкой (РТУ № БУ 6562), а эндотрахеальные трубки - чистым глицерином.

Список литературы

Берлин Л.3., Мещеряков А.В. Наркоз и дозирование анестетиков. - М.: Медицина, 1980.

Бурлаков Р.И., Гальперин Ю.Ш., Юревич В.М. Автоматическая вентиляция легких. М.: Медицина, 1986.

Михельсон В.А. Детская анестезиология и резниматологи Я.М.: Медицина, 1985. С. 33 34.

Святая Л.П., Котрас Р.Л. Устройство, контроль и ремонт аппаратов ингаляционного наркош. М.: Медицина, 1985.

Грцишн А.И., Юревич В.М. Аппараты ингаляционного наркоз А.М.: Медицина, 1989

Дыхании является исторически самым первым способом, сохранившим значение и используемым в настоящее время. Современные требования и условия заставили видоизменить методику проведения ингаляционной общей анестезии. Из ценнейшего наследия прошлого анестезиологи используют данные детального изучения клинической картины ингаляционной анестезии, что позволяет без технического мониторинга осуществлять...

Мышц блокируется в большей или меньшей части сегментов. Если при этом функция диафрагмальных нервов сохранена, то дыхательная недостаточность обычно не возникает. Влияние эпидуральной и спинальной анестезий на функцию желудочно-кишечного тракта связано с преобладанием тонуса парасимпатической нервной системы и характеризуется усилением перистальтики и секреции желез. Предполагают, что это может...

Неингаляционных средств может остро развиться депрессия дыхания. Помимо рассмотренных методов, при не очень продолжительных хирургических вмешательствах и перевязках можно с успехом использовать анестезию фторотаном в сочетании с закисью азота. 2. Анестезиологическая помощь в военно-полевых условиях Военная анестезиология в настоящее время является самостоятельной областью военной медицины...

25 ЕД). Продожается терапия, направленная на снижение степени эндогенной интоксикации: введение гемодеза, белковых препаратов, ингибиторов протеаз (контри-кал в дозе 1 000000 ЕД). Из состояния общей анестезии больного следует выводить после окончания операции и наложения швов на рану. К этому периоду необходимо восстановить спонтанное дыхание, сознание, мышечный тонус и поддерживать стабильные...

1. Очистку аппаратов необходимо проводить как можно раньше после их использования.

2. Провести гигиеническую обработку рук согласно стандарта "гигиена рук".

3. Надеть перчатки.

4. Подготовить рабочее место:

Емкость с дезинфицирующим раствором;

Емкость с дистиллированной водой;

Дезинфицирующее средство;

Перчатки;

Ватно-марлевые тампоны;

Стерильную пеленку.

5. Разобрать аппарат. Съемные части (шланги, влагосборники, увлажнитель, тройники, адаптер, коробки клапанов и другие части в зависимости от марки аппарата) погрузить полностью в контейнер с дезинфицирующим раствором, разрешенных для этих целей в установленном порядке (например, 3% пероксимед на 60 мин.)

Если режим дезинфекции не совмещен с предстерилизационной очисткой, дополнительно проводят предстерилизационную очистку ОСТ 42-21-2-85

6. Дважды с интервалом 15-20 мин. протереть корпус аппарата снаружи салфеткой смоченной дезинфицирующим раствором для этих целей (обладающим моющими свойствами, например 3% пероксимед).

7. Бумажный фильтр снять и погрузить в контейнер для дезинфекции отходов класса "Б".

8. Съемные части аппарата после выдержки экспозиции режима дезинфекции промыть в том же растворе; адаптер, клапан, тройники, влагосборники и другие части с помощью ватно-марлевого тампона, в течении 25-30 сек.

9. Ватно-марлевый тампон сбросить в контейнер для дезинфекции отходов класса "Б".

10. Прополоскать съемные части аппарата под проточной водой, выложить на чистую пеленку и провести азопирамрвый самоконтроль.

11. Съемные части аппарата прополоскать в емкости с дистиллированной водой и выложить на стерильную простынь.

12. Снять использованные перчатки и погрузить их в контейнер с дезинфицирующим раствором.

13. Провести гигиеническую антисептику рук согласно стандарта "гигиена рук". Надеть чистые перчатки.

14. Собрать аппарат, присоединить все продезинфицированные и высушенные съемные части.

15. Во влагосборник залить дезинфицирующий раствор (0,5% раствор хлоргикседина), подключить аппарат на 60 мин при газотоке 2 л/мин.

16. Удалить остатки дезинфицирующего раствора. Продуть аппарат потоком кислорода 8-10 л/мин по полузакрытому контуру в течении 15 мин.

Основные узлы наркозного аппарата:

Система подачи газов - баллоны с газообразными веще­ствами ,

Кислород хранится в голубых баллонах.

Закись азота хранится в баллонах серого цвета.

- дозиметры для газообразных анестетиков, положение поплавка напротив метки до­зиметра указывает на подачу газов в соответствующих метке литрах в минуту.

- испарители для жидких анестетиков,

- дыхательный контур аппарата , который состоит из:

- дыхательного мешка, или меха, куда поступает газонар­котическая смесь из аппарата и откуда ее вдыхает па­циент;

- шлангов для соединения частей аппарата и дыхательно­го контура аппарата с дыхательными путями пациента;

- адсорбера, или поглотителя , углекислого газа;

- увлажнителя.

Деятельность медсестры при подготовке рабочего места к наркозу .

1. Подготовка наркозно-дыхательной аппаратуры.

После окончания операции вся наркозно-дыхательная аппаратура после использо­вания подлежит обработке и дезинфекции.

2. Подготовка столика медсестры-анестезиста:

АЛГОРИТМ

I. Оденьте маску, вымойте руки с мылом, вытрите полотенцем.

II. Приготовьте столик для медикаментов

1. Проверьте по списку все медикаментозные средства, обращая особое внимание на наличие сильнодействующих препаратов и наркотических веществ, а также средств для наркоза.

3. Разместите препараты в соответствующие ячейки столика.

3. Проверьте наличие кровезаменителей, их качество.

4. Приготовьте одноразовые системы для переливания жидкостей.

5. Приготовьте изотонический раствор натрия хлорида, заправьте им систему

для капельных вливаний.

6. Приготовьте стерильные шприцы по 20 мл (для барбитуратов), по 10 мл (

для релаксантов), на 1-5 мл (для других препаратов);

7. Приготовьте

Гидрокортизоновую мазь для смазывания интубационной трубки,

Раствор фурацилина 0,02% для смачивания бинта.

8. На этом же столе разместите подсобные ножницы, лейкопластырь.

III. На инструментальном столике приготовьте набор для интубации трахеи:

Ларингоскоп с прямым и изогнутым клинками, проверьте исправность,

Интубационные трубки разных размеров,

Резиновый баллончик или шприц для раздувания манжеты на

интубационной трубке,

Языкодержатель,

Роторасширитель,

Воздуховоды,

Коннекторы для соединения интубационной трубки с дыхательными

шлангами аппарата

Также приготовьте тонометр, фонендоскоп, маски разных размеров.

IV. На стерильном столике приготовьте наборы стерильные для:

Катетеризации подключичной вены,

Перидуральной анестезии,

Венесекции.

Стерильный пинцет и корнцанг,

Зажим с салфеткой (тубфер),

Стерильный катетер для отсасывания слизи из дыхательных путей,

Стерильные желудочные зонды необходимых размеров,

Обеззараживание аппаратов ИВЛ является необходи­мой мерой для предупреждения перекрестного инфицирования больных и профилактики внутрибольничной ин­фекции.

Дыхательный контур аппаратов - это полая газопроводящая система, которая находится в тесном контакте с воздухом, выдыхаемым и вдыхаемым больными. Бакте­риальному обсеменению подвергаются элементы дыхательного контура, которые находятся в непосредственном контакте с кожей и слизистой оболочкой дыхательных пу­тей больных (лицевые маски, трахеальные трубки, трахеостомические канюли, мундштуки-загубники и т.д.) Уста­новлено также распространение микроорганизмов с потоком выдыхаемого газа по линии выдоха дыхательного кон­тура, откуда при работе по реверсивному (закрытому, по­лузакрытому) дыхательному контуру микрофлора свобод­но проникает в линию вдоха . Однако и при работе по нереверсивному (открытому, полуоткрытому) дыхательному контуру узлы аппаратов, составляющие ли­нию вдоха, также подвергаются бактериальному загряз­нению. В первую очередь это касается присоединительных элементов (коннекторов, адаптеров, тройников, всевоз­можных соединительных трубок и т.д.), составляющих так называемую неразделенную часть дыхательного кон­тура, но микрофлора проникает также и в шланг вдоха. Этому способствует диффузия водяных паров, несущих микроорганизмы, пульверизационный (разбрызгивающий) эффект газовой струи, кашель больных внутрь аппарата, так называемый эффект перепуска клапанов вдоха и т.д.

При работе по нереверсивному контуру, если выдыхае­мый газ по шлангу выдоха поступает в аппарат (это свой­ственно большинству аппаратов ИВЛ), а не выходит наружу непосредственно из нереверсивного клапана, инфицирование больного может наступить в результате стекания из шланга выдоха в дыхательные пути больного кон­денсата, обильно насыщенного патогенной микрофлорой. Наконец, необходимо учитывать поступление в дыхатель­ные пути больного бактериальной микрофлоры окружаю­щего воздуха, зараженность которого может быть значи­тельно увеличенной также за счет выброса патогенных микроорганизмов из линии выдоха аппаратов, особенно при одновременной ИВЛ у нескольких больных в одном помещении.

Таким образом, можно считать доказанным как сам факт обсеменения аппаратов бактериальной микрофлорой, так и возможность перекрестного инфицирования ею боль­ных [Вартазарян Д.В., Курпосова Л.М. и др., 1980; Lumley, 1976]. Однако если возможность внесения бактерий в дыхательные пути доказана, то все еще спорным остается вопрос о последствиях такого инфицирования. Достаточно ли количество микроорганизмов и настолько ли они виру­лентны, чтобы преодолеть иммунологические барьеры и, в частности, фагоцитарную активность слизистой оболочки дыхательных путей и вызвать патологические процессы? Ряд исследователей выражают сомнение по этому поводу . Однако другие авторы счи­тают, что больные, у которых применяется дыхательная аппаратура, весьма подвержены респираторным заболе­ваниям. У многих из них организм ослаблен основным или сопутствующими заболеваниями, снижающими сопротив­ляемость; интубация или трахеостомия, а также само по себе воздействие ИВЛ, особенно при недостаточном увлаж­нении и обогреве вдыхаемого газа, могут влиять на со­стояние слизистой оболочки и активность мерцательного эпителия дыхательных путей. Все это увеличивает опас­ность возникновения патологического процесса вслед за перекрестным инфицированием и делает необходимыми меры по обеззараживанию аппаратов искусственной вентиляции легких .

^ Микрофлора аппаратов и ее локализация. Микробная флора, обнаруживаемая в аппаратах ИВЛ, чрезвычайно разнообразна. Наиболее часто встречается золотистый, стафилококк, синегнойная палочка, пневмобактерия Фридлендера, негемолитический и зеленящий стрептококки, а также другие микроорганизмы, в том числе микобактерии туберкулеза.

Наибольшая бактериальная обсемененность наблюдает­ся в тройнике пациента и коннекторах, в шланге (особен­но гофрированном) и клапане выдоха, в увлажнителе и сборнике конденсата. Бактериальное загрязнение адсорбе­ра и испарителей анестетиков чрезвычайно мало, что мо­жет быть объяснено бактериостатическим действием на­тронной извести и жидких анестетиков. При прочих рав­ных условиях бактериальное загрязнение металлических деталей значительно меньше, чем деталей из резины и особенно пластмасс. Объясняется это явлениями аутостерилизации за счет олигодинамического действия ионов ме­талла, а также тем, что гладкие металлические поверхно­сти не удерживают большого количества частиц, несущих микроорганизмы.

^ Некоторые определения. Обеззараживание (деконтаминация) - процесс, приводящий к устранению загряз­нения и снижению, вплоть до полного уничтожения, бак­териальной обсемененности объектов, подвергаемых соот­ветствующей обработке. Таким образом, обеззараживание - это общий термин, подразумевающий и очистку, и дезинфекцию, и стерилизацию.

Очистка - удаление инородных веществ с поверхно­стей объекта, приводящее к уменьшению (но не уничто­жению) бактериального загрязнения.

Дезинфекция - уничтожение только вегетативных (неспорообразующих) форм бактерий. Сравнительно не­давно этот термин относился к уничтожению только пато­генных микроорганизмов. Однако в настоящее время по­нятие «патогенный» и «непатогенный» микроорганизмы утратило свое абсолютное значение. Дезинфекция счита­ется достигнутой при уничтожении 99,99% бактерий.

Стерилизация - уничтожение всех микроорганиз­мов, в том числе вегетативных форм бактерий, спор, виру­сов; не может иметь места понятие «практически сте­рильный»: объект может быть либо стерильным, либо нестерильным.

^ МЕТОДЫ ОБЕЗЗАРАЖИВАНИЯ

Сложность устройства аппаратов ИВЛ, наличие в их конструкции труднодоступных участков, а также различ­ных по физико-химическим свойствам материалов ограни­чивают применение многих широко используемых методов и средств дезинфекции и стерилизации. Поэтому ни в ко­ем случае не следует игнорировать любые доступные ме­тоды обеззараживания, приводящие если не к полному уничтожению, то к значительному снижению бактериаль­ной загрязненности аппаратов.

^ Очистка аппаратов. Обязательным условием надежности обеззараживания аппаратов является предварительная или так называемая предстерилизационная очистка. Она должна уменьшить количество микроорганизмов и уда­лить пирогенные вещества, кусочки тканей и органические остатки, которые могут быть токсичными сами по себе или препятствовать дальнейшему процессу дезинфекции или стерилизации.

Наиболее широко распространенным методом очистки является применение водных растворов моющих средств. При этом съемные и разборные детали, а также присоеди­нительные элементы аппаратов подвергаются очистке (мойке) путем полного погружения в растворы, а поверх­ности частей или весь аппарат, если они не могут быть погружены в растворы, подвергаются протиранию моющи­ми средствами.

Существуют следующие способы мойки: ручной, меха­низированный с помощью специальных моечных машин и ультразвуковой.

Ручная мойка деталей аппаратов и при­соединительных элементов. Процесс мойки включает ряд последовательных этапов:

1. Разборка узлов, снятие шлангов, присоединительных элементов, крышек клапанных коробок, отсоединение и опорожнение сборников конденсата и т.д.

2. Предварительная промывка разобранных узлов, кото­рую осуществляют под струёй очень теплой проточной во­ды с мылом и как можно быстрее после применения ап­паратов.

3. Замачивание, при котором раствор проникает через загрязняющие наложения, размягчает их и отделяет от поверхности объектов. Обрабатываемые элементы погру­жают на 15 мин в свежеприготовленный горячий раствор моющего средства. Последнее необходимо выбирать по его детергентным свойствам, а не по дезинфицирующему дей­ствию.

Согласно рекомендациям Всесоюзного научно-исследова­тельского института дезинфекции и стерилизации (ВНИИДиС), лучшие результаты мойки обеспечиваются применением 0,5% раствора перекиси водорода и моющего средства («Новость», «Лотос», «Астра», «Прогресс», «Сульфанол», «Триас-А»). Синтетические моющие сред­ства в 0,5% концентрации обладают высокой моющей спо­собностью, хорошо разрыхляют различного рода загрязне­ния, не влияют на качество металла, пластмасс, резины и легко с них смываются. При температуре 50°С актив­ность моющих растворов возрастает.

Для приготовления 1 л моющего раствора 0,5% концент­рации следует брать 20 мл пергидроля (30-33% Н 2 О 2), 975 мл водопроводной воды, нагретой до 50°С, и 5 г мою­щего средства.

4. Окончательная мойка осуществляется в том же рас­творе, в котором были замочены элементы и детали аппа­ратов. Детали моют ватно-марлевыми тампонами или пы­жами. Не следует пользоваться для мытья щетками или «ершами», от которых могут остаться на внутренних по­верхностях деталей щетинки. Марлевые тампоны и пыжи после однократного использования следует выбрасывать.

5. Прополаскивание после мойки удаляет с деталей остатки моющего раствора. Вымытые детали прополаски­вают сначала в проточной, а затем в дистиллированной воде.

Предварительную промывку, замачивание и мойку де­талей удобно проводить в любой моечной установке, имею­щей две рядом расположенные раковины. Пензенский за­вод «Дезхимоборудование» выпускает специальную мойку с двумя отделениями, снабженную смесителем для холод­ной и горячей воды с душевой сеткой на гибком шланге. Такая мойка входит в «Комплекс оборудования для осна­щения центра обработки наркозно-дыхательной аппара­туры».

6. Сушка. Чистые детали выкладывают на стерильную простыню и тщательно высушивают. Если детали не будут подвергаться дальнейшему обеззараживанию, то сушка важна потому, что влага способствует росту грамположительных бактерий. Если же для дальнейшего обеззаражи­вания применяется жидкий дезинфектант, то остатки воды на поверхности деталей будут разбавлять раствор дезинфектанта и понизят его эффективность.

Очистка, проведенная по указанной выше методике, по данным ВНИИДиС, снижает бактериальную обсемененность в 1000 раз.

Ручная мойка имеет ряд недостатков: большие трудо­затраты, прямое соприкосновение рук персонала с загряз­ненными деталями и моющим раствором, невозможность строго регламентировать качество очистки, которое зави­сит от квалификации и усердия персонала. Поэтому все более широкое применение находит способ механи­зированной мойки. Он осуществляется в специаль­ных моечных машинах. Заводом «Дезхимоборудованне» выпускается «Машина моечная стационарная для элемен­тов наркозно-дыхательной аппаратуры». Она входит в со­став упомянутого выше комплекса. После предваритель­ной промывки и замачивания детали помещают в специ­альную кассету, которую устанавливают в моечную машину. В автоматическом режиме в течение 30 мин осущест­вляется мойка деталей горячим (45°С) раствором синте­тических моющих средств и прополаскивание. Кассета с вымытыми деталями перемещается на специальной по­движной стойке и устанавливается в гнезде сушильного устройства. Сушка деталей осуществляется потоком фильтрованного воздуха, нагретого до 60°С.

В последние годы используются ультразвуковые мою­щие установки, производящиеся во многих странах. Уль­тразвуковая очистка достигается благодаря кавитации, возникающей под действием ультразвука, а также вслед­ствие «эффекта перемешивания» растворителей.

В ультразвуковом дезинфекционном промывателе модели RS-500D фирмы «Татэбэ» (Япония) сочетание ультразвуковых воздействий мощностью до 600 Вт с покачиванием моечной камеры обеспечивает удаление воздуха из очищаемых изделий и перемешивание моющего раствора, что повышает эффективность промывки. Мощная форсунка со скрещиванием струй обеспечивает быстрый и равномерный смыв. При­мерно через каждые 2 мин осуществляется автоматический спуск грязной воды. В медицинском ультразвуковом очистителе Ми-212 фир­мы «Шарп корпорейшн» (Япония), помимо очистки, осуществляется и дезинфекция за счет использования раствора хлоргексидина.

Универсальная ультразвуковая установка для очистки различного рода загрязнений лабораторной посуды, медицинского инструмента и мелких деталей выпускается и в нашей стране.

^ Дезинфекция аппаратов. Тепловые методы. Для обеззараживания аппаратуры наиболее широкое примене­ние находит так называемое влажное тепло.

Пастеризация. Детали погружают на 10-15 мин в воду, нагретую до 65-70°С. Погружение должно быть полным. Имеются специальные установки для пастериза­ции, представляющие собой водяные бани с нагревателя­ми и извлекаемыми сетками для деталей. Подвергшиеся пастеризации детали тщательно высушивают в стериль­ных простынях и сохраняют сухими в асептических усло­виях. Пастеризация разрушает большую часть неспорообразующих бактерий. Преимущества этого метода в его простоте и отсутствии повреждающего действия на ма­териал деталей.

Кипячение. Продолжающееся, не менее 30 мин ки­пячение при 100°С убивает все вегетативные (неспорообразующие) бактерии, большинство спорообразующих и почти все вирусы. Для надежной дезинфекции необходимо учитывать высоту над уровнем моря и на каждые 300 м подъема над уровнем моря удлинять время кипячения на 5 мин. Во избежание образования на деталях накипи сле­дует пользоваться дистиллированной водой. Для более эф­фективного разрушения спор, а также для предотвращения коррозии металлов рекомендуется подщелачивать воду добавлением гидрокарбоната натрия в количестве 20 г/л. Все детали при кипячении должны быть покрыты слоем воды не менее 5 см. После кипячения, как и после пастериза­ции, детали должны быть высушены и законсервированы в асептических условиях. Достоинство метода - его простота, эффективность, доступность. Недостаток - кумуля­тивное разрушающее действие по отношению к нетермо­стойким материалам аппаратов.

Химические методы. Все химические дезинфектанты должны быть высокоэффективными, простыми в эксплуатации и позволяющими избежать токсического дей­ствия для больных и персонала, не должны разрушать материал аппаратов при многократной дезинфекции. Сле­дует учитывать, что ни один из дезинфектантов не гаран­тирует полного уничтожения всех вегетативных бактерий. Грамотрицательные микроорганизмы труднее убиваются химическими дезинфектантами, чем грамположительные. Туберкулезные и другие кислотоустойчивые бациллы обла­дают высокими свойствами сопротивления, а споры - еще большими.

Активность дезинфектантов возрастает при более высо­ких концентрациях и температурах растворов. Большие объемы растворов являются более эффективными при оди­наковой их концентрации; чем длительнее погружение, тем эффективнее обеззараживание (однако следует учиты­вать, что раствор дезинфектанта при нахождении в нем объектов дезинфекции считается действующим не более 24 ч). Все химические дезинфектанты инактивируются обильным промыванием водой, мылом, синтетическими детергентами.

Формальдегид. Бесцветный газ, хорошо раствори­мый в воде, с резким запахом. Водные растворы фор­мальдегида успешно применяются в качестве дезинфици­рующего средства в жидком и парообразном виде, обла­дают высокой бактерицидной активностью. В качестве жидкого дезинфектанта используют 3% раствор формаль­дегида, который заливают в плотно закрываемые емко­сти из стекла, пластмассы или эмалированного металла. Дезинфекцию производят при полном погружении деталей в раствор в течение 30 мин. Экспозицию увеличивают до 90 мин при инфицировании микобактериями туберкулеза. Для нейтрализации формальдегида детали промывают 10% раствором аммиака и погружают на 60 мин в сте­рильную воду, периодически прополаскивая до полного удаления остатков аммиака и запаха формальдегида.

Перекись водорода. Является хорошим окисли­телем. Эффективна преимущественно в отношении грамотрицательной флоры. Выпускается промышленностью в виде 30-33% водного раствора под названием «Пергид­роль». Для дезинфекции употребляют 3 % водный раствор, в который погружают детали на 80. мин. Прополаскивание, сушка и хранение деталей аналогичны описанным выше. В рекомендуемой концентрации растворы перекиси водо­рода не вызывают коррозии металлов, не портят резино­вые и пластмассовые поверхности.

Хлоргексидин (гибитан) . Фильтры, помещенные в линии вдоха аппаратов ИВЛ, за­щищают пациентов от инфицирования микроорганизмами с потоком вдыхаемого газа, а расположенные в линии вы­доха - предотвращают микробное обсеменение аппаратов и окружающей среды.

Фильтр включает стакан-корпус и патрон для филь­трующей ткани, которая обеспечивает защиту дыхатель­ных путей от бактерий и частиц размером свыше 5 мкм. Задерживающая способность фильтра «ФИБ-1» состав­ляет 99,99% при непрерывном прохождении воздуха, обсе­мененного микроорганизмами со скоростью 30 л/мин в течение не менее 11 ч. Сопротивление фильтра потоку не превышает 6 мм вод.ст.

В аппаратах ИВЛ применяются также противопылевые фильтры, устанавливаемые на патрубке, через который в аппарат поступает воздух окружающей атмосферы. По­скольку микроорганизмы в значительном количестве ад­сорбируются пылевыми частицами и иными воздушными взвесями, противопылевые фильтры осуществляют также антибактериальную защиту вдыхаемого воздуха. В аппа­ратах ИВЛ РО-6Н, РО-6Р и РО-6-03 на входе в аппарат установлены противопылевые устройства, включающие сменный бесклапанный противопылевой респиратор ШБ-1 («Лепесток-5»).

Ряд важных методических вопросов остаются нерешен­ными, например, когда следует проводить стерилизацию, а когда достаточна только дезинфекция аппаратов; с какой периодичностью и какими предпочтительными методами осуществлять обеззараживание; решать ли эти вопросы однозначно или дифференцированно для разных узлов и деталей аппарата и для всего аппарата в целом?

Можно было бы подходить к решению этих трудных во­просов с позиции максималистских требований: «все уз­лы», «весь аппарат в целом», «обязательно стерилизо­вать», «как можно чаще» и т.д. Но тогда возникает так называемая дилемма стерилизации : с од­ной стороны, желание идеального результата, а с дру­гой - высокая трудоемкость, необходимость значительного числа сменных запасных аппаратов и деталей к ним, ку­мулятивное разрушение материалов и более быстрый из­нос аппаратуры.

Однако бесспорно, что существует необходимость обез­зараживать аппараты ИВЛ. А это значит, что медицинский персонал, во-первых, должен знать методы очистки, дезин­фекции и стерилизации аппаратов ИВЛ, во-вторых, иметь соответствующее техническое оборудование для их выполнения, в-третьих, располагать такими аппаратами ИВЛ, конструкция и материалы которых дают возможность про­ведения наиболее предпочтительных и рациональных мето­дов обеззараживания.

Основные правила, изложенные в этой главе, а также в «Инструкции по очистке (мойке) и обеззараживанию ап­паратов ингаляционного наркоза и искусственной венти­ляции легких» и в ОСТе 42-2-2 - 77 «Стерилизация и дезинфекция изделий медицинского назначения. Методы, средства и режимы», должны стать основой разумных решений и действий, с одной стороны, медицинского персо­нала, а с другой - разработчиков медицинской аппара­туры.

Стерилизация наркозно-дыхательной аппаратуры и инструментов предпринимается для предотвращения инфицирования больных и развития у них инфекционных осложнений. Стерилизацию наркозно-дыхательной аппаратуры и контроль за ее стерильностью должна осуществлять сестра-анестезист. После применения наркозный аппарат и аппарат для искусственной вентиляции легких должны быть вымыты и простерилизованы поблочно или в собранном виде (в зависимости от конструкции). Для мойки элементов и комплектующих деталей применяются смеси, состоящие из 3% раствора перекиси водорода и 0,5% раствора моющих средств "Прогресс", "Астра", "Лотос" или "Триас-А". В эту смесь погружают все узлы и приспособления, составляющие дыхательную систему. Во время механической обработки в этом растворе в течение 15-20 мин при температуре +50°С происходит не только очистка, но и стерилизация всех частей наркозного аппарата и аппарата для искусственной вентиляции легких. Для более надежной стерилизации узлы аппаратов, а также комплектующие детали, эндотрахеальные трубки, трахеостомические канюли, рото- и носоглоточные воздуховоды, лицевые маски и другие приспособления, изготовленные из резины и пластмассы, погружают в один из перечисленных ниже дезинфицирующих растворов:

3% раствор перекиси водорода 60 мин 3% раствор формальдегида 30 мин 1% раствор хлорамина 30 мин 0,1% раствор дезоксона 20 мин

В растворе дезоксона нельзя обрабатывать металлические детали.

В случаях инфицирования аппарата кокковой флорой, устойчивой к антибиотикам, или микобактериями туберкулеза рекомендуется применять один из следующих растворов:

3% раствор перекиси водорода 3 ч 10% раствор формальдегида 60 мин 1% раствор дезоксона 30 мин 5% раствор хлорамина 2 ч

После применения наркозно-дыхательной аппаратуры у больных со столбняком или газовой гангреной проводится стерилизация одним из указанных ниже растворов:

6% раствор перекиси водорода 6 ч 1% раствор дезоксона 45 мин 10% раствор формальдегида 4 ч

После стерилизации необходимо тщательно промыть все детали в стерильной дистиллированной воде. Последующее хранение всех приспособлений и аппаратуры должно осуществляться в асептичных условиях. Если аппарат не собран, то гофрированные шланги, дыхательные мешки и меха хранят в подвешенном состоянии, а приспособления для ларингоскопии и интубации - на стерильных сетках, завернутых в стерильные простыни. Собранные аппараты оборачивают стерильными простынями.

Для стерилизации аппаратов в собранном виде применяют аэрозольную смесь, состоящую из 20% параформальдегида, 30% этилового спирта и 50% фреона-12. Предварительно необходимо разобрать и промыть аппараты теплой водой, а затем после сборки закрытой дыхательной системы ввести в нее 4,5-5 г аэрозоля и включить респиратор на 1,5 ч при минутной вентиляции 20 л. Затем в дыхательную систему несколько раз вводят по 20 мл 23% раствора аммиака в воде для нейтрализации формальдегида. Время нейтрализации составляет 3 ч. После этого открытую дыхательную систему продувают в течение 7 ч. Запах формальдегида должен отсутствовать. Если он сохраняется, то необходима дополнительная нейтрализация. Допустим слабый запах формальдегида или аммиака.

Наружные части аппаратов протирают марлевыми салфетками, смоченными хлорамином. Затем протирают их 1% раствором хлорамина или 3% раствором перекиси водорода с 0,5% раствором одного из моющих поверхностно-активных веществ.

Так же обрабатывают другое анестезиологическое оборудование (столики, тележки, баллоны для газов, которые хранятся в операционном блоке).

Нужно помнить, что пары формалина, выделяющиеся из обеззараживающих растворов, раздражают дыхательные пути и могут вызвать отравление, поэтому необходимо соблюдать следующие меры предосторожности:

1. Комната, в которой проводится стерилизация, должна быть просторной, хорошо проветриваться и находиться вдали от палат и помещений, где могут быть люди.

2. В помещении, где проводится стерилизация, не должно быть людей, за исключением тех, кто проводит стерилизацию. Время нахождения в этом помещении должно быть максимально ограничено. После помещения частей наркозно-дыхательной аппаратуры в емкости с антисептическим раствором (а при стерилизации аппаратов в собранном виде - после введения аэрозоля и включения аппарата) персонал должен покинуть помещение на все время стерилизации.

3. Во время промывки и стерилизации наркозно-дыхательной аппаратуры сестра и санитарка должны обязательно работать в резиновых перчатках.

Эндотрахеальные трубки можно стерилизовать кипячением в течение 2-3 мин. Предварительно трубку необходимо тщательно промыть в теплой воде с мылом или синтетическим моющим средством. Для мытья внутренней поверхности используют ершик.

Клинки ларингоскопов обмывают теплой водой с мылом, а затем протирают салфеткой, смоченной в спирте. Можно воспользоваться также 3% раствором перекиси водорода, 3% раствором формальдегида или 1% раствором хлорамина. Применять раствор дезоксона нельзя. После стерилизации клинок необходимо хорошо промыть водой.

Шпрей (пульверизатор) обмывают снаружи и протирают спиртом.

Подробная инструкция по обеззараживанию (стерилизации), мойке и чистке наркозной и дыхательной аппаратуры имеется в приложении № 4 к приказу министра здравоохранения СССР № 720 от 31 июля 1978 г.